在大鼠实验中，多次尾静脉注射是不少科研人（尤其是刚接触的学生）的 “小难题”—— 反复穿刺容易扎伤血管、让大鼠应激，还可能影响给药效率。其实掌握尾静脉留置针的基础操作，就能轻松解决这些问题。

灵赋拓普小动物部门整理了这份超详细的大鼠尾静脉留置针实操教程，从工具准备到步骤拆解，手把手教你做好基础操作，帮新手少走弯路～

操作前先熟悉工具，留置针主要有三部分，功能清晰好上手：

• 硬针：负责穿刺皮肤和血管，找准位置就靠它；

• 软管：穿刺成功后留在血管里，后续给药不用再扎针；

• 肝素帽：封住留置针末端，防止出血还能抗凝，保持血管通畅。

  
  

1. 准备工作 & 静脉充盈

先把需要的工具备齐：大鼠固定器、留置针、酒精棉球、纸胶布、弹力绷带、抽满生理盐水的注射器、苦味酸。

接着将大鼠放进固定器，用酒精棉球反复擦拭尾巴，充分暴露侧边的静脉血管，方便后续穿刺。

2. 穿刺关键步骤

这时候把进针角度降到 5°-10°，慢慢推进留置针软管，等软管完全进入血管后，再轻轻拔出硬针。最后通过肝素帽注入生理盐水，确认血管通畅就好啦。

3. 固定 & 日常维护

用paper胶布固定好留置针，再用弹力绷带缠绕一圈，滴上苦味酸加固。后续每天记得更换外侧的弹力绷带，再补滴一次苦味酸，保证留置针不脱落、血管不堵塞。

• 减少大鼠应激：不用反复扎针，大鼠少遭罪，实验数据也更稳定；

• 适配多次给药：要是一天需要多次尾静脉注射，或者用特殊药物，留置针能直接用，不用每次都找血管；

• 长效能用：一次留置能维持 3-5 天，期间血管通畅不堵塞，给药效率更高。

  
  

我们一直希望把实用的小动物实验技巧分享给大家，不管是新手学生还是资深科研人，都能在细节上少踩坑、提高效率。如果在操作中遇到问题，或者需要其他小动物实验的基础指导，也欢迎随时和我们交流～